Сосуд для стерилизации хирургических инструментов. Организация работы в стерилизационной. подготовка и стерилизация режущих, оптических, общехирургических инструментов. стерилизация. Что должно обязательно стерилизоваться в медицинских учреждениях

Существуют холодные и горячие способы стерилизации инструментов. К горячим относятся: стерилизация кипячением в воде, фламбирование и др. К холодным способам относится стерилизация в тройном растворе Каретникова.

Стерилизация кипячением в воде. Предложен Давидсоном и Кумером в 1881 году. Проводится в стерилизаторах. Вымытые инструменты погружаются в предварительно прокипяченую (10 минут) воду для удаления углекислоты и кислорода и кипятят 30 минут. Перед стерилизацией инструменты проверяют на пригодность. Если они были покрыты вазелином, то его вытирают. Смазанные вазелином иглы протирают и промывают эфиром или спиртом. Режущую часть скальпеля предварительно заворачивают в марлю. Хирургические иглы нанизывают на кусок марли с тем, чтобы они не затерялись, если инструментов много.

С целью повышения эффекта стерилизации инструменты кипятят в 3% растворе двууглекислой соды, или в 0,25% растворе едкого натра. По окончании стерилизации инструменты тотчас извлекают с решеткой стерилизатора, открывая крышку так, чтобы пар выходил из стерилизатора, не обжигая при этом руки и лицо. При необходимости повторной стерилизации воду не сливают.

Инструменты с решетки стерилизатора раскладывают на инструментальном столике, покрытым в три ряда стерильной простыней или полотенцем. Раскладку инструментов лучше проводить щипцами Микулича или корнцангом. При этом строго соблюдается определенный порядок -- однотипные инструменты на одном месте и в определенной, характерной для каждой операции последовательности. Марлю, в которой были завернуты скальпели, следует развернуть. Разложенные инструменты покрывают стерильной простыней или полотенцем.

Инъекционные иглы и шприцы стерилизуют в отдельном стерилизаторе и только в воде, поскольку наличие щелочей и др. (желательно дистиллированной) дезинфектантов может привести к инактивации лекарственных средств (например, щелочь инактивирует новокаин). При этом иглы и шприцы предварительно тщательно моют проточной водой и помещают в холодную воду в разобранном виде. Иглы стерилизуют с мандренами и помещают в стерилизатор через 10 минут после того, как в нем закипит вода.

Стерилизация инструментов фломбированием (обжиганием), Разобранный инструмент раскладывают в чистый эмалированный тазик или ванну, наливают необходимое количество спирта и зажигают его. В период горения спирта инструмент желательно перевернуть, поскольку в местах соприкосновения с дном он не может хорошо простерилизоваться.

Этот способ дорогой и небезопасный. Кроме того, длительное обжигание отпускает сталь, портит нержавеющие покрытия, тупит режущие части инструментов. Поэтому фламбирование используется лишь при оказании экстренной хирургической помощи, а также для стерилизации эмалированной посуды, когда за недостатком времени невозможны другие способы стерилизации.

Холодные способы стерилизации имеют большое практическое значение, поскольку позволяют обеспечить стерильность хирургических инструментов даже в полевых условиях, где нет возможности применить надежную тепловую обработку.

Стерилизация инструментов в тройном растворе Каретникова. Метод предложен в 1938 году. Раствор состоит из 20 г формалина, 15 г соды, 3 г карболовой кислоты и 1 литра дистиллированной воды. Продолжительность стерилизации 30 минут. Способ обеспечивает надежную стерилизацию инструментов, не портит их, предохраняет от ржавчины. При продолжительном хранении в банках с притертыми пробками раствор не теряет своих бактерицидных свойств и остается прозрачным.

Аналогичным образом можно стерилизовать инструменты в растворе бактерицида 1:3000 с содой 1% - 10 минут: в риваноле (этакридина лактат) 1:500 - 30 минут; в 1% спиртовом растворе бриллиантовой зелени - 15 минут.

Шприцы стерилизуют в растворе Китцлера, который состоит из: 3 г карболовой кислоты, 15 г буры и 20 г формалина на 1 литр воды. Продолжительность стерилизации -- 30 минут.

При гнойных операциях инструменты, бывшие в употреблении, вытирают влажной марлей (руками в перчатках), затем стерилизуют в течение 10 минут в 2% растворе углекислого натрия с добавлением 0,5% раствора лизола, вытирают сухим полотенцем и высушивают. При операциях, связанных с анаэробными процессами, а также в случае загрязнения инструментов землей их погружают на 10 минут в раствор лизола и после механической очистки стерилизуют в течение 30 минут в 0,25% растворе едкого натрия или в 2% растворе углекислой соды с прибавлением 0,5% лизола, после чего вытирают обычным порядком.

Хранение инструментов. Инъекционные иглы можно хранить в банках с притертой пробкой в жидкости Никифорова (спирт с эфиром поровну) или в растворе Китцлера. При этом в каждую иглу следует ввести мандрен. Темные пятна или ржавчину, образовавшуюся на инструментах можно удалить с помощью мела с нашатырным спиртом в отношении 2:1 пли порошком водной окиси железа.

Инструменты необходимо хранить в чистом сухом помещении, инструментальных шкафах, всегда плотно закрытых. Во избежание появления ржавчины на инструментах желательно иметь в шкафах сосуды, наполненные наполовину хлористым кальцием, которые хорошо поглощают влагу из воздуха.

Нельзя хранить инструменты вместе с препаратами йода. Редко употребляемые инструменты должны быть смазаны нейтральным жиром -- вазелином или натуральной олифой.

Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде. Для этого их заворачивают в марлю (чтобы не подгорели) и кипятят в течение 30 минут или холодным способом в парах формалина. Берут соответствующей величины стеклянный сосуд с герметической крышкой. На дно сосуда наливают немного формалина. Затем подвешивают к крышке пли укрепляют на специальной подставке катетеры (бужи, другие резиновые инструменты) и плотно закрывают крышку. Продолжительность стерилизации -- 24 часа. Резиновые изделия, бывшие в употреблении, механически очищают перед каждой стерилизацией теплой водой с мылом и мягкими щетками или куском марли.

Резиновые катетеры и бужи можно стерилизовать путем кипячения в 40% растворе хлористого натрия в течение 30 минут или холодным способом в парах формалина, или в 0,1% водном или 0,1% спиртовом (спирт 70° или 96°) растворе декаметоксина (протирают салфеткой в течение 3 минут).

Стерилизация инструментов с оптикой, которую используют для эндоскопии, моют в воде с мылом и протирают салфеткой, смоченной 6% раствором перекиси водорода с 0,5% раствором синтетического моющего средства (Рубленко М.В.. 1996).

Оптические инструменты можно стерилизовать в растворе фурацилина (1:5000) в течение 30-50 минут. Оптическая система протирается этиловым спиртом или 2,5% раствором гибитана (хлоргексидина биглкжоната).

При стерилизации инфузионных систем, шприцев-автоматов, что имеют в своем составе полимерные материалы, следует обращать особое внимание на узлы и элементы, которые вступают в непосредственный контакт с лечебным веществом. Предварительно эти места моют 3% раствором перекиси водорода с 0,5-1% раствором синтетического моющего средства или смесью равных частей 1% раствора натрия гидрокарбоната и I % раствора аммиака. Дальнейшая обработка предполагает погружение инструментов в раствор одного из нижеперечисленных антисептиков: 0,5-2,5% гибитана (хлогексидина биглюконата) (20-30 минут), 0,1% диоцида (30 минут), 6% перекиси водорода (6 часов), 4,8% первомура (15 минут), или 70° этилового спирта (2 часа). Все антисептические средства, кроме перекиси водорода после стерилизации смывают стерильной водой.

ТЕМА 15.

ОРГАНИЗАЦИЯ РАБОТЫ В СТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ. ПОДГОТОВКА И СТЕРИЛИЗАЦИЯ РЕЖУЩИХ, ОПТИЧЕСКИХ, ОБЩЕХИРУРГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ. СТЕРИЛИЗАЦИЯ

ШОВНОГО МАТЕРИАЛА

Подготовка и стерилизация инструментов

Этап I – предстерилизационной подготовки. Ее цель – тщательная механическая очистку инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удаление пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита.

Порядок предстерилизационной подготовки инструментария:

Дезинфекция;

Замачивание в мыльно-перекисном растворе на 15 минут при температуре 50°С;

Мытье в течение 30 с в мыльно-перекисном растворе с помощью ватно-марлевого тампона;

Полоскание под проточной водой в течение 30 с;

Полоскание дистиллированной водой;

Просушка;

Пробы на качество предстерилизационной подготовки (пробы на наличие моющих средств, пробы на наличие остатков крови, пробы на наличие остатков жира).

Этап II – укладка и подготовка к стерилизации. После предварительной просушки на воздухе инструменты укладываются для сушки в сухожаровой шкаф, который нагревают до 80 °С при открытых дверях. Затем двери шкафа закрывают и начинают стерилизацию.

Этап III – стерилизация. Стерилизация инструментов, шприцев, игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафныхстерилизаторах. После закрытия дверей шкафа температуру доводят до +160 °С или +180 °С, поддерживая ее автоматически. Стерилизация длится 60 минут при +180 °С или 150 минут при 160 °С. После отключения системы подогрева и понижения температуры до +70-50 °С двери шкафа открывают и стерильным инструментом закрывают крышками металлические коробки с инструментами.

Стерилизацию инструментов, содержащих пластмассовые детали (например, кассеты со скрепками), шприцев можно делать в паровомстерилизаторе (автоклаве). Упакованные предметы укладывают в стерилизационную камеру. Если они положены в биксы, то их части должны быть открыты. Хирургические инструменты и шприцы стерилизуют в течение 20 минут при 2 атм. и температуре +132,9 °С. Время началастерилизации отсчитывают от достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, системы для переливания крови, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм. и температуре +120 °С в течение 45 минут или при 0,5 % атм. и температуре + 110 °С в течение 180 минут. При разгрузке автоклава закрывают отверстия в биксах.

Методы стерилизации в сухожаровых и паровых стерилизаторах следует рассматривать как основные. Метод стерилизации кипячением не применяется согласно ОСТ 42-21-2-85 "Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения".

Стерилизацию инструментов и предметов, не подлежащих термической обработке (эндоскопы, торакоскопы, лапараскопы, аппаратыили блоки аппаратов для искусственного кровообращения, гемосорбции), осуществляют в специальном газовом стерилизаторе. Предметы для стерилизации помещают в герметичную стерилизационную камеру, которую наполняют окисью этилена. Срок экспозиции – 16 часов при температуре 18 °С. Стерилизация может проводиться также смесью окиси этилена и бромистого метилена при температуре +55 °С в течение 6 часов.

Этап IV – сохранение стерильных материалов. Их хранят в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материалов в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 часов, а при дополнительной упаковке материала в хлопчатобумажный мешок – 72 часа. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.

Приготовления моющих и дезинфицирующих растворов

Современные средства используются для:

– Дезинфекции.

– Совмещение дезинфекции и предстерилизационной обработки инструментов, гибких и жестких эндоскопов.

– Дезинфекции лабораторной посуды.

Для проведения дезинфекции используются:

1. Дезактин 2,0 г на 1 л для текущей уборки (0,2 % раствор) 10,0 г на 1 л для генеральной уборки (1,0 % раствор).

2. Неохлор 6 мл на 1 л для текущей уборки (0,05 % раствор) 29 мл на 1 л для генеральной уборки (0,25 % раствор).

3. Хлорантоин 2,0 г на 1 л для текущей уборки (0,2 % раствор) 10,0 г на 1 л для генеральной уборки (1,0 % раствор).

4. Дезэффект 23 мл на 1 л для текущей уборки (2,3 % раствор) 38 мл на 1 л для генеральной уборки (3,8 % раствор).

5. Максисан 1,7 мл на 1 л для текущей уборки (0,17 % раствор) 2,5 мл на 1 л для генеральной уборки (0,25 % раствор).

6. Септодор-форте 0,25 мл на 1 л для текущей уборки(0,025 % раствор) 2,0 мл на 1 л для генеральной уборки (0,2 % раствор).

7. Корзолекс плюс (только для инструментов) 30 мл на 1 л (3 % раствор).

8. Корзолекс Базик (только для инструментов) 20 мл на 1 л (2 % раствор).

9. Корзолекс экстра 15 мл на 1 л для текущей уборки (1,5 % раствор) 20 мл на 1 л для генеральной уборки (2,0 % раствор).

10. Бациллоцид расант 2,5 мл на 1 л для текущей уборки(0,25 % раствор) 5,0 мл на 1 л для генеральной уборки (0,5 % раствор).

11. Бланидас 2,0 г на 1 л для текущей уборки и инструментов (0,2 % раствор) 10,0 г на 1 л для генеральной уборки (1 % раствор).

Пробы на качество предстерилизационной обработки инструментов

Качество предстерилизационной обработки оценивают путем выполнения проб:

– на наличие крови (бензидиновая, азопирамовая и амидопириновая пробы);

– на наличие моющих средств (фенолфталеиновая проба);

– На наличие жира (проба с суданом III).

Контроль за качеством предстерилизационной обработки осуществляется:

– СЭС и дез.станцией не реже одного раза в квартал,

– самоконтроль зав. централизованной стерилизационной 1 раз в день.

Проверяют 1 % от каждого наименования изделий, подлежащих обработке за одну смену.

1.Азопирамовая проба (на наличие крови).

На 1 л раствора: 100 г азопирама, 1,0-1,5 г солянокислого анилина, 96 % этиловый спирт до 1 л.

Готовый раствор хранится в плотно закрытом флаконе в темноте при температуре +4 °С (в холодильнике) 2 месяца, при комнатной температуре (+18- +23 °С) не более 1 месяца.

Допустимо пожелтение реактива без формирования осадка.

Рабочий раствор готовят перед постановкой пробы, смешивая азопирам и 3 % перекись водорода в равных пропорциях. Рабочий раствор пригоден 1-2 часа.

Нельзя проводить пробу на горячих инструментах, хранить раствор при ярком свете, рядом с нагревательными приборами и при повышенной температуре.

Проверка рабочего раствора азопирама: 2-3 капли раствора наносят на пятно крови.

Если через 1 минуту появляется фиолетовая окраска, реактив годен к применению.

Если через 1минуту окраски нет, реактив не пригоден.

Постановка пробы: 2-3 капли реактива наносят на инструменты или протирают их марлевой салфеткой, смоченной реактивом.

Проба является положительной, если через 1 минуту появляется фиолетовое окрашивание.

Если инструменты загрязнены ржавчиной и хлорсодержащими окислителями, появляется бурая окраска.

В шприц вносят 3-4 капли, несколько раз продвигают поршнем, чтобы смочить всю внутреннюю поверхность, реактив оставляют на1 минуту. После чего сливают его на марлевую салфетку. Иглы проверяют, пропуская через них реактив, выдавливая его на марлевые салфетки. Катетеры проверяют, заполняя их полость реактивом полностью из чистого шприца или пипетки, оставляют на 1 минуту. Затем выжимают на марлевую салфетку.

Качество предстерилизационной обработки эндоскопов:

– проверяют инструментальный канал, внешнюю поверхность рабочей части эндоскопа;

– в отверстие "вход" и "выход" вводят на небольшую глубину ватный жгутик, смоченный реактивом, оставляют на 1 минуту. Наружную поверхность протирают марлевой салфеткой 5×5 см, смоченной реактивом.

2. Амидопириновая проба (на наличие крови).

Реактив готовят перед применением. Смешивают 5 % спиртовой раствор амидопирина, 30 % раствор уксусной кислоты и 3 % раствор перекиси водорода в равных пропорциях.

Проба положительна, если сразу или через 1 мин после нанесения реактива появляется сине-фиолетовое окрашивание. При постановке азопирамовой и амидопириновой проб окраска, которая появляется позже, чем через 1 минуту, не учитывается.

3.Фенолфталеинова проба (на наличие остатков щелочей моющих средств).

Готовят 1 % спиртовой раствор фенолфталеина.

Готовый раствор хранится во флаконе с притертой пробкой в холодильнике 1 месяц.

Проба положительна, если после обработки реактивом появляется розовая окраска. Это свидетельствует о наличии остатков щелочей от моющих средств.

4.Проба с суданом III (на наличие жира).

Приготовление раствора: 0,2 г судана III, 0,2 г метиленового синего растворяют в 70 мл 96 % этилового спирта, подогретого на водяной бане до 60 °С, затем добавляют 10 мл 20-25 % раствора аммиака и 20 мл дистиллированной воды. Готовый раствор хранится во флаконе с притертой пробкой в холодильнике 6 месяцев. Постановка пробы: 3-5 мл реактива наносят на инструменты (внутрь шприцев), через 10 с краску смывают водой. Желтые пятна указывают на наличие жировых загрязнений. При положительном результате любой из проб вся партия инструментов подлежит повторной обработке.

Методы стерилизации режущих, оптическихи общехирургических инструментов

Стерилизация режущих инструментов, обернутых в два слоя специальной бумаги, проводится сухожаровым методом при температуре +180 °С. Стерилизация инструментов и оптических аппаратов (лапараскоп, торакоскоп) может быть проведена в спиртовом растворе первомура, 2,5 % растворе глутарового альдегида в течение 360 минут или в растворе препарата "Сайдекс" в течение 60 минут. Стерилизацию аппаратов и инструментов химическими средствами следует проводить в металлических коробках с крышкам, что бы предупреждть испарение препарата. При отсутствии специальной посуды стерилизуют в эмалированной или стеклянной посуде. Инструменты заливают раствором так, чтобы он полностью покрывал их, и закрывают крышкой. В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов по одному из указанных способов, используют стерилизацию инструментов обжигом. В металлический лоток наливают 15-20 мл спирта, несколько инструментов укладывают на дно и спирт поджигают. Метод выжигания недостаточно надежен, пожарно- и взрывоопасен (наличиекислорода, пара наркотических веществ в воздухе помещений), поэтому его используют в исключительных случаях, строго соблюдая правила противопожарной безопасности.

Виды шовного материала

Шовные материалы классифицируются на:

I. Рассасывающиеся:

а) животного происхождения (кетгут, коллаген);

б) растительного происхождения – на основе целлюлозы (окцелон, кацелон)

в) синтетические материалы:

– на основе полигликолидов (полисорб, викрил, дексон, максон);

– полидиоксанон;

– полиуретан.

2. Материалы, которые рассасываются медленно: шелк, полиамид (капрон).

3. Материалы, которые не рассасываются :

а) полиэфиры (лавсан, суржидак, мерсилен, етибонд);

б) полиолефины (суржипро, пролен, полипропилен, суржилен);

в) фторполимеры (гортекс);

г) поливинилиден (корален);

д) металлическая проволока, металлические скобы.

Методы стерилизации шовного материала

Для соединения тканей во время операции используют нити различного происхождения, металлические скрепки, скобки, проволоку. Существует более 40 видов шовных материалов. Наибольшеераспространение имеют шелк, лавсан, капрон, кетгут, металлические скрепки. Применяют рассасывающиеся нитки и не рассасывающиеся нитки. К природным рассасывающимся ниткам относятся нитки из кетгута. Продление сроков рассасывания кетгута достигается импрегнацией его металлами (хромированный, серебренный кетгут). Используют синтетические рассасывающиесянитки – нитки из дексоната, викрила, окцилона и т.п. К натуральным нитям, которые не рассасываются,относятся нитки из натурального шелка, хлопка, конского волоса, к синтетическим – нитки из капрона, лавсана, дакрона, нейлона, фторлона и т.п.

Шовный материал должен удовлетворять следующим основным требованиям: иметь точную, ровную поверхность и не вызывать дополнительного повреждения тканей, иметь хорошие манипуляционные свойства – хорошо скользить в тканях, быть эластичным (иметь достаточное растяжение, предупреждать сжатие и некроз тканей при их нарастающем отеке), быть крепким в узле; не иметь гигроскопических свойств и не разбухать, быть биологически совместимым с живыми тканями и не давать аллергического воздействия на организм. Разрушение нитей должно совпадать со сроками заживления раны.

Нагноение раны происходит значительно реже при использовании шовных материалов, имеющих антимикробную активность за счет введенных в их структуру противомикробных препаратов (летилан-лавсановые, фторлоновые, ацетатные и другие нитки, содержащие нитрофурановые препараты, антибиотики и т.п.). Синтетические нити, содержащие антисептические средства, имеют все преимущества шовных материалов и в то же время имеют антибактериальное действие.

Шовный материал может быть простерилизован излучением в заводских условиях. В ампулах мотки шелка, кетгута, капрона хранят при комнатной температуре и используют по мере необходимости.

Лигатурный материал стерилизуют паром под давлением 2,0 атм. в течение 20 минут или при 1,1 атм. течение 45 минут. Неиспользованный материал может быть однократно перестерилизован при 1,1 атм. течение 45 минут.

Возможна экспресс-стерилизация в 4,8 % растворе первомура при температуре 18-20 °С в течение 15 минут в закрытой эмалированной посуде.

Стерилизация кетгута . Термическая обработка кетгута не применяется. В заводских условиях его стерилизуют ионизирующими лучами. Методы стерилизации кетгута химическими способами предусматривают предварительное обезжиривание, для чего свернутыекольца кетгута помещают в герметично закрытые банки с эфиром на 24 часа.

При стерилизациипо Клаудиусу сливают из банки эфир и кольца кетгута заливают водным раствором Люголя (йода чистого 10 мл, йодида калия 20 мл, дистиллированной воды до 1000 мл) на 10 суток, затем заменяют раствор Люголя свежим и снова оставляют в нем кетгут на 10 суток. После этого раствор Люголя заменяют 96 % спиртом. Через 4-6 суток производят посев на стерильность.

Метод Губарева предусматривает стерилизацию кетгута спиртовым раствором Люголя (чистого йода и йодида калия по 10 мл, 96 % этилового спирта до 1000 мл). После обезжиривания эфир сливают, и кетгут заливают раствором Люголя на 10 суток, после замены раствора новым кетгут оставляют в последнем еще на 10 суток. После бактериологического контроля, при благоприятных результатах, разрешают использование материалов.

Метод Ситковского. После обезжиривания в стерильных условиях стандартные нитки кетгута разрезают на 3 части по 1,25 м длиной, протирают раствором сулемы 1:1000 и сворачивают в кольца, которые опускают в 2 % водный раствор йодида калия: для ниток № 0 – на 30 с, для № 1 – на 1 минуту, № 2 – 2 минуты, № 3 – 3 минуты и т.п. (время в минутах соответствует номеру нитки). После пропитки ниток йодидом калия кольца кетгута нанизывают на толстые нитки и подвешивают на расстоянии 7-8 см от дна стеклянной банки, на которое насыпают кристаллический йод из расчета: в банку емкостью 3 л – 40 г йода, емкостью 5 л – 60 г йода. Банки герметично закрывают. Сроки экспозиции кетгута различны в зависимости от толщины нитей (№ 0, № 1 готовы через 3 суток, № 2, № 3, № 4 – через 4 суток, № 5, № 6 – через 5 суток). После бактериологического контроля нитки пригодны к использованию.

Способы контроля стерильности (обязанности в ходе стерилизации)

Методы контроля стерильности подразделяются на прямые и косвенные.

Прямой метод контроля является результатом бактериологического исследования (наиболее точный метод):

Методика:

– специальным стерильным тампоном проводят по стерильным инструментам, коже рук хирурга, операционному полю и др.;

– тампон помещают в стерильную пробирку и направляют в бактериологическую лабораторию, где делают посев на различные питательные среды.

Косвенные методы (используются в основном при термических способах стерилизации: они определяют величину температуры, при которой проводилась обработка, не давая точного ответа о присутствии или отсутствии микрофлоры), используются при каждой стерилизации.

Стерилизация – это процесс устранения всех форм жизни, в том числе и инфекционных агентов (грибы, бактерии, споры, вирусы), которые присутствуют на поверхностях, содержатся в жидкостях.

Подвергаться обязательной стерилизации должны:

Предметы, которые соприкасаются с поверхностью ран, имеют контакт с кровью и инъекционными препаратами

Диагностическая аппаратура, которая соприкасается со слизистыми оболочками и может вызвать их повреждение.

Выделяют три основных этапа стерилизации:

Дезинфекция

Предстерилизационная очистка

Стерилизация

Стерилизация достигается путем применения термической, химической или радиоактивной обработки.

Качество стерилизации во многом зависит от контакта стерилизующего агента с поверхностью стерилизуемого инструмента. Выбор агента связан с природой инструмента, который необходимо стерилизовать.

Процесс стерилизации происходит в специальном устройстве, которое называется стерилизатор .

Методы стерилизации

1) Термический метод стерилизации

- Паровая стерилизация (автоклавирование)

При термической обработке гибнут живые организмы. Этот процесс ускоряется при добавлении влаги, но обычного пара недостаточно для стерилизации. Необходимо давление, больше атмосферного, что позволит повысить температуру пара для термического разрушения микробной жизни. Пар под давлением вызывает денатурацию и коагуляцию белка и его ферментов в клетках.

Устройство, в котором происходит стерилизация паром, называется автоклав. Весь цикл стерилизации в автоклаве может занять от 15 до 60 минут, в зависимости от давления, температуры и материала стерилизуемых инструментов.

Автоклавирование подходит для предметов, которые переносят влажность, высокое давление (от 1 до 3,5 атмосфер выше внешней среды), а также высокую температуру (от + 121°С до + 148 °C). Например, хирургические инструменты.

Отличным представителем устройств для паровой стерилизации является серия автоклавов Statim . Компактные кассетные стерилизаторы продлевают срок службы хрупких инструментов.

- Воздушная стерилизация (сухожаровой шкаф)

Сухое тепло в виде горячего воздуха используется в основном для стерилизации объектов на основе безводных масел, нефтепродуктов и порошков, что не может быть стерилизовано посредством пара и газа. Гибель микробных организмов происходит за счет окисления и медленного процесса сжигания белка в клетках. При отсутствии влаги в процессе стерилизации требуются более высокие температуры.

- Микроволновая стерилизация

Под действием не ионизирующих излучение микроволн, создаются гипертермические условия, которые нарушают жизненные процессы микроорганизмов. Температура цикла ниже, чем при стерилизации паром. Время цикла гораздо меньше – 30 секунд. Металлические инструменты могут быть стерилизованы, если их поместить в условия частичного вакуума, в стеклянной емкости. Стерилизатор такого типа отлично подойдет для небольших объемов стерилизации.

2) Химический метод стерилизации

- Стерилизация газом

Окись этилена. Основной цикл стерилизации состоит из пяти этапов и занимает около 2,5 часов, за исключением времени аэрации. Газ вступает в химическую реакцию с аминокислотами, белками, ДНК и предотвращает размножение микробных организмов.

Такой метод стерилизации подходит для предметов, которые не могут выдержать высокую температуру и влажность, необходимую для паровой стерилизации. Благодаря низким температурным условиям (+ 30 ° до + 60 ° C), данный метод стерилизации хорошо подходит для медицинских устройств со встроенной электроникой. Недостаток метода – легкая воспламеняемость.

Формальдегид. Газ убивает микроорганизмы путем коагуляции белка в клетках. Данный метод стерилизации является сложным и менее эффективным, чем другие методы стерилизации. От его использования для стерилизации почти отказались в Соединенных Штатах, Канаде и Австралии, но он до сих пор используется в некоторых странах Европы и Азии.

- Плазменная стерилизация

Плазма представляет собой состояние вещества отличное от твердого, жидкого или газообразного состояния. Это состояние достигается за счет создания сильного электрического или магнитного поля. Свободные радикалы перекиси водорода взаимодействуют с клеточными мембранами, ферментами, нуклеиновыми кислотами и нарушают жизненные функции микроорганизмов.

Основной цикл плазменной стерилизация состоит из четырех этапов (создание вакуума, Н2О2 инъекция, диффузия, плазменный разряд). Процесс занимает от 1 до 3 часов.

Данный метод стерилизации подходит для объектов, которые не могут выдержать высокую температуру и влажность, необходимую для паровой стерилизации.

- Стерилизация озоном

Озон является формой кислорода. Процесс стерилизации происходит посредством окисления, разрушения органических и неорганические веществ. Озон проникает в мембрану клетки, вызывая ее взрыв. Озон является нестабильным газом, но может быть легко генерирован из кислорода. Время цикла - до 60 минут в зависимости от размера камеры или нагрузки.

3) Радиационный метод стерилизации

Является наиболее эффективным методом стерилизации, но ограничивается только использованием в коммерческих целях.

Ионизирующее излучение производит ионы, которые выбивают электроны из атомов. Эти электроны ударяют смежный атом и либо присоединяются, либо выбивают электрон из второго атома. Ионная энергия преобразуется в тепловую и химическую энергию. Эта энергия вызывает гибель микроорганизмов путем разрушения молекулы ДНК, что предотвращает клеточное деление и распространение биологической жизни. Основными источниками ионизирующего излучения являются бета-частицы и гамма-лучи.

Каждый метод стерилизации имеет свои особенности. При выборе того или иного метода, следует учитывать возможные побочные эффекты, особенно когда речь идет о стерилизации различных электронных устройств.

I этап- предстерилизационная подготовка

ХИМИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ

Газовая стерилизация

При газовой стерилизации действующим агентом являются газообразные антисептики (пары формалина, окись этилена). Проводится она в специальных герметичных камерах, на дно которых кладут таблетки формальдегида. Инструменты помещают на сетку, над химическим препаратом. Сроки стерилизации 6-8 часов. Преимуществом метода является минимальное вредное влияние на стерилизуемые объекты. Поэтому газовая стерилизация применяется для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

Стерилизация растворами антисептиков

В качестве антисептиков при стерилизации в растворах применяются тройной раствор, 96 % этиловый спирт, 6 % перекись водорода, спиртовой раствор хлоргексидина. Применяется этот метод для стерилизации режущих инструментов, так как не приводит к затуплению.

Стерилизацию осуществляют следующим образом, инструменты в раскрытом или разобранном виде погружают в раствор. Время стерилизации зависит от вида антисептика, при использования спирта или тройного раствора 2-3 часа, перекиси водорода - 6 часов.

ТЕХНОЛОГИЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ

Произвести стерилизацию - это не просто подвергнуть стерилизуемый объект воздействию физического или химического фактора. Современная стерилизация - это целый технологический процесс, включающий несколько этапов.

Этапы стерилизации:

II этап - укладка и подготовка к стерилизации;

III этап - стерилизация;

IV этап - хранение стерильного материала.

Вне зависимости от вида стерилизуемого объекта и метода стерилизации, этапность выполнения её сохраняется всегда.

Этап 1 - предстерилизационная подготовка. Целью предстерилизационной подготовки является - механическая очистка инструментов, удаление пирогенных веществ, уничтожение вируса гепатита. До недавнего времени объем предстерилизационной подготовки определялся степенью инфицированности инструментов, обработка инструментов после чистых операций (перевязок), гнойных операций, операций у больных, перенесших гепатит, и в группе риска по СПИДу существенно отличались. Сейчас правила предстерилизационной подготовки ужесточены. Учитывая высокую опасность распространения СПИДа, обработка должна гарантировать уничтожение вируса иммунодефицита человека. Инструменты после гнойных операций, операций у больных, перенесших в течение 5 последних лет гепатит, а также при риске СПИДа обрабатываются отдельно от других.

Предстерилизационная подготовка состоит из следующих этапов:

· обеззараживание

· высушивание

Обеззараживание (дезинфекция)

Использованные инструменты погружаются в емкости с дезинфицирующими средствами. В качестве дезинфицирующих средств можно применять 3 % раствор хлорамина (экспозиция 40-60 минут), 6 % раствор перекиси водорода (экспозиция 90 минут), анолита (экспозиция 30 мин). Полидез – 1 % - 45’; 0,5 % - 60; комбинированный дезинфектант инструментария – 1 % - 15’; инкрасепт – 1 % - 30’, дезавит – 1 % - 20’. После проведения дезинфекции инструменты промываются проточной водой.

20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt

Количество слайдов: 20

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_3.jpg" alt=">Методы стерилизации хирургических инструментов Подвергаться обязательной стерилизации должны: - предметы, которые соприкасаются с поверхностью"> Методы стерилизации хирургических инструментов Подвергаться обязательной стерилизации должны: - предметы, которые соприкасаются с поверхностью ран, имеют контакт с кровью и инъекционными препаратами - диагностическая аппаратура, которая соприкасается со слизистыми оболочками и может вызвать их повреждение.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_4.jpg" alt=">Методы стерилизации хирургических инструментов Перед стерилизаций инструменты протирают, удаляя с них вазелин, и проверяют"> Методы стерилизации хирургических инструментов Перед стерилизаций инструменты протирают, удаляя с них вазелин, и проверяют их исправность. Инъекционные иглы после удаления смазки промывают эфиром или спиртом. Сложные инструменты (ножницы, иглодержатели, гемостатические пинцеты) стерилизуют полураскрытыми или в разобранном виде. Режущие и колющие инструменты обвёртывают марлей для предохранения от затупления. Стерилизация инструментов – первый шаг на операции

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_5.jpg" alt=">Алгоритм стерилизации хирургического инструментария І этап - подготовительный. Цель - подготовка инструментов к стерилизации."> Алгоритм стерилизации хирургического инструментария І этап - подготовительный. Цель - подготовка инструментов к стерилизации. Проводят замачивание инструментария в моющем растворе, мытье в моющем растворе с помощью щеток, тщательное промывание проточной водой, ополаскивание дистиллированной водой, высушивание; ІІ этап - основной. Цель - собственно стерилизация. Стерилизация инструмента осуществляется горячими и холодными методами. ІІІ этап - заключительный. Цель - контроль качества стерилизации. Проводят с помощью химических индикаторов, которые отображают уровень необходимой для стерилизации температуры, которые закладываются в шкаф вместе с инструментом, или бактериологическим методом - проводят посев из инструментов на питательную среду.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_6.jpg" alt=">Методы, средства и режимы стерилизации Выбор того или иного метода стерилизации конкретных изделий зависит"> Методы, средства и режимы стерилизации Выбор того или иного метода стерилизации конкретных изделий зависит от особенностей изделия и самого метода – его достоинств и недостатков. Самые распространенные методы – паровой и воздушный.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_8.jpg" alt=">Паровой метод стерилизации Стерилизующий агент – горячий пар под давлением. Для этого метода используют"> Паровой метод стерилизации Стерилизующий агент – горячий пар под давлением. Для этого метода используют автоклав. Упаковки: биксы, крафт-пакеты, бумага-ламинат, бязь. Материалы: полимеры, стекло, латекс, ткань, коррозийностойкие металлы. Достоинства: высокая проницаемость пара, большой выбор упаковки, дольше сохраняется стерильность, дешевый и простой в использовании метод. Недостатки: увлажнение изделий, вызывает коррозию металлов.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_9.jpg" alt=">Паровой метод стерилизации Работа автоклава контролируется показателями манометра и термометра. Существует три"> Паровой метод стерилизации Работа автоклава контролируется показателями манометра и термометра. Существует три основных режима стерилизации: при давлении 1,1 атмосферы - 1 час, при давлении 1,5 атмосферы - 45 минут, при давлении 2 атмосферы - 30 минут.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_10.jpg" alt=">Воздушный метод стерилизации Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах - сухожаровых шкафах-стерилизаторах. Стерилизующий агент"> Воздушный метод стерилизации Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах - сухожаровых шкафах-стерилизаторах. Стерилизующий агент – сухой горячий воздух (160-200oС). Упаковки: крафт-пакеты, бязь. Материалы: металл, текстильные изделия. Достоинства: дешевый, простой метод, не вызывает коррозии металла, не происходит увлажнения упаковки и изделий. Недостатки: ограниченный выбор упаковки, медленное и неравномерное прогревание изделий, необходимость использования более высоких температур, невозможность использовать материалы из резины, полимеров.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_11.jpg" alt=">Воздушный метод стерилизации Инструменты укладывают на полки шкафа-стерилизатора и вначале высушивают в течение 30"> Воздушный метод стерилизации Инструменты укладывают на полки шкафа-стерилизатора и вначале высушивают в течение 30 минут при температуре 80°С с приоткрытой дверцей. Стерилизация осуществляется при закрытой дверце в течение 1 часа при температуре 180°С. После этого при остывании шкафа-стерилизатора до 50-70°С дверцу приоткрывают и при окончательном остывании разгружают камеру со стерильным инструментарием.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_12.jpg" alt=">Обжигание и кипячение Обжигание в настоящее время в хирургической клинике для стерилизации инструментов"> Обжигание и кипячение Обжигание в настоящее время в хирургической клинике для стерилизации инструментов не используется. Обжигание металлических инструментов проводится открытым пламенем. Кипячение долгое время было основным способом стерилизации инструментов, но в последнее время применяется редко, так как при этом методе достигается температура лишь в 100°С, что недостаточно для уничтожения спороносных бактерий.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_13.jpg" alt=">Обжигание и кипячение Инструменты кипятят в специальных электрических стерилизаторах различной емкости. Инструменты"> Обжигание и кипячение Инструменты кипятят в специальных электрических стерилизаторах различной емкости. Инструменты в раскрытом виде (шприцы в разобранном виде) укладывают на сетку и погружают в дистиллированную воду (возможно добавление гидрокарбоната натрия - до 2% раствора). Обычное время стерилизации - 30 минут с момента закипания. После окончания стерилизации сетку с инструментами достают с помощью специальных стерильных ручек.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_15.jpg" alt=">Газовый метод стерилизации Для этого метода используют газовые стерилизаторы. Стерилизующий агент – формальдегид или"> Газовый метод стерилизации Для этого метода используют газовые стерилизаторы. Стерилизующий агент – формальдегид или этилен-оксид. Упаковки: бумага-ламинат, пергамент, крафт-бумага. Материалы: полимеры, стекло, металл. Достоинства: невысокая температура, использование любых материалов. Недостатки: токсичность для персонала и взрывоопасность при несоблюдении техники безопасности, продолжительный цикл стерилизации.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_16.jpg" alt=">Газовый метод стерилизации Отличительной чертой метода является его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария,"> Газовый метод стерилизации Отличительной чертой метода является его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария, в связи с чем способ используют прежде всего для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_17.jpg" alt=">Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных"> Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных материалов. Стерилизующий агент – ионизирующие γ и β излучения. Упаковки: помимо бумажных используют пакеты из полиэтилена. Достоинства: надолго сохраняется стерильность в упаковке. Недостатки: дороговизна метода. Радиационный – основной метод промышленной стерилизации. Используется предприятиями, выпускающими стерильные изделия однократного применения.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_18.jpg" alt=">Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Используются изотопы Со60 и Cs137. Доза проникающей радиации"> Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Используются изотопы Со60 и Cs137. Доза проникающей радиации должна быть весьма значительной - до 20-25 мкГр, что требует соблюдения особо строгих мер безопасности. В связи с этим лучевая стерилизация проводится в специальных помещениях и является заводским методом стерилизации (непосредственно в стационарах она не производится). Стерилизация инструментов и прочих материалов проводится в герметичных упаковках и при целостности последних сохраняется до 5 лет. Герметичная упаковка делает удобными хранение и использование инструментов (необходимо просто вскрыть упаковку).

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_19.jpg" alt=">Стерилизация растворами антисептиков Стерилизация растворами химических антисептиков не приводит к затуплению инструментов, в"> Стерилизация растворами антисептиков Стерилизация растворами химических антисептиков не приводит к затуплению инструментов, в связи с чем применяется для обработки прежде всего режущих хирургических инструментов. Для стерилизации в основном используют три раствора: тройной раствор*, 70° этиловый, 6% перекись водорода. В последнее время для холодной стерилизации оптических инструментов стали применять спиртовой раствор хлоргексидина, первомур и другие. Тройной раствор: карболовая кислота - 3 г, формалин - 20 г, сода - 15 г, вода - 1000 мл.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_20.jpg" alt=">Стерилизация растворами антисептиков Для холодной стерилизации инструменты полностью погружают в раскрытом (или разобранном) виде"> Стерилизация растворами антисептиков Для холодной стерилизации инструменты полностью погружают в раскрытом (или разобранном) виде в один из указанных растворов. При замачивании в спирте и тройном растворе инструменты считаются стерильными через 2-3 часа, в перекиси водорода - через 6 часов. Считаю этот метод самым оптимальным для использования «в поле».